2. Методы идентификации грам (-) бактерий.

2.1. Оксидазный тест.

2.2. Индольный тест.

2.3.Ферментация углеводов (“пестрый ряд”).

2.4.ONPG-тест.

2.5.Утилизация цитрата.

2.6.Утилизация малоната.

2.7.Тест с трибутирином (для идентификации M.catarrhalis).

2.8.Тесты декарбоксилирования и гидролиза аминокислот.

2.9.Фенилаланиновый тест.

2.10.Сероводородный тест (H2S-тест).

2.11.Гидролиз эскулина.

2.12.Уреазный тест.

2.13.Разжижение желатина.

2.14.Тест с метиловым красным.

2.15.Тест Фогес-Проскауэра.

2.16.Редукция нитратов.

2.17.Окислительно-ферментативный (ОФ) тест.

 

 

Далее

2.1.        Оксидазный тест.

 

Принцип. Определенные виды бактерий вырабатывают либо цитохромоксидазу, либо индофенолоксидазу (железосодержащий гемопротеин), которые катализируют перенос электронов от донаторов водорода (НАДН) к акцепторам (обычно кислороду). В оксидазном тесте бесцветный краситель p-фенилендиамин дигидрохлорид, используемый как искусственный акцептор электронов, при участии оксидазы окисляется и образует окрашенное вещество индофенол синий. Тест используют для первичной характеристики грам(-) бактерий. Особую помощь он оказывает при идентификации бактерий родов Aeromonas, Plesiomonas, Pseudomonas, Campylobacter, Pasteurella, Neisseria.

Реагенты. Можно использовать готовые реагенты или готовить  их в лаборатории. Для приготовления 1% раствора тетраметил-p-фенилендиамин дигидрохлорида добавляют 5 мл дистиллированной воды к 50 мг порошка реагента  (заготовленные впрок навески реагента хранят в укупоренных пластиковых или стеклянных пробирках) и тщательно перемешивают. Реактив готовят ежедневно. Неиспользованный остаток реактива сбрасывают.

 Коммерческие тесты представляют собой  импрегнированные реагентом полоски или диски фильтровальной бумаги.

 Контроль качества проводят в день постановки теста с культурами P. aeruginosa АТСС 27853 (положительный контроль) и E. coli АТСС 25922 (отрицательный контроль). 

 

Ход исследования.

Прямой способ на чашках: Наносят 1 каплю реагента непосредственно на изучаемую колонию и наблюдают появление темно-фиолетового окрашивания.

Непрямой способ на фильтровальной бумаге.

Þ          Помещают полоску (диск) фильтровальной бумаги в пустую чашку Петри и капают 1-2 капли реактива, либо используют готовые полоски, импрегнированные реагентом, и смачивают их деионизированной водой.

Þ          Стерильным аппликатором или посевной петлей берут исследуемую колонию и размазывают ее по полоске или диску.

Þ          При положительной реакции через 10-30 сек. Появляется окрашивание интенсивно синего или фиолетового цвета. При отрицательной реакции цвет не изменяется. При неопределенном результате, когда окрашивание появляется позже 30 сек., исследование необходимо повторить со свежей культурой (18-24-часовой). Как правило, грам (-) бактерии  с замедленной оксидазной реакцией не принадлежат к семейству Enterobacteriaceae, так как они не продуцируют фермент цитохромоксидазу.

 

Ограничения и предосторожности.

1)           Нельзя использовать для посева культуры петли или проволоку из нержавеющей стали или нихрома, так как может наблюдаться ложно положительная реакция за счет образования продуктов окисления при обжиге петли в пламени для стерилизации.

2)           Изучение бактерий, выросших на агаре МакКонки, Левина или других дифференциальных средах, не подходит для этого теста, так как индикаторы с этих сред могут дать ложно отрицательную реакцию.

3)           Ложно отрицательная реакция может наблюдаться в смешанных культурах, относящихся к родам  Pseudomonas и Neisseria, так как те виды  Pseudomonas, которые вырабатывают оксидазу, также продуцируют некую ингибирующую субстанцию, влияющую на выработку оксидазы  Neisseria spp.

4)           Импрегнированную реагентом бумажную полоску после смачивания используют только 1 раз.

5)           Результаты следует учитывать не более 30 сек.

6)           Во избежание ошибок при выборе схемы идентификации оксидазный тест следует применять для всех грам (-) бактерий.

 

 

 

Далее