2.3.Ферментация
углеводов (“пестрый ряд”).
2.7.Тест с трибутирином (для
идентификации M.catarrhalis).
2.8.Тесты
декарбоксилирования и гидролиза аминокислот.
2.10.Сероводородный
тест (H2S-тест).
2.14.Тест с
метиловым красным.
2.17.Окислительно-ферментативный
(ОФ) тест.
2.1.
Оксидазный тест.
Принцип. Определенные виды бактерий вырабатывают либо
цитохромоксидазу, либо индофенолоксидазу (железосодержащий гемопротеин),
которые катализируют перенос электронов от донаторов водорода (НАДН) к
акцепторам (обычно кислороду). В оксидазном тесте бесцветный краситель p-фенилендиамин
дигидрохлорид, используемый как искусственный акцептор электронов, при участии
оксидазы окисляется и образует окрашенное вещество индофенол синий. Тест
используют для первичной характеристики грам(-) бактерий. Особую помощь он
оказывает при идентификации бактерий родов Aeromonas, Plesiomonas, Pseudomonas, Campylobacter, Pasteurella, Neisseria.
Реагенты.
Можно использовать готовые реагенты или готовить их в лаборатории. Для приготовления 1%
раствора тетраметил-p-фенилендиамин дигидрохлорида добавляют 5 мл
дистиллированной воды к 50 мг порошка реагента
(заготовленные впрок навески реагента хранят в укупоренных пластиковых
или стеклянных пробирках) и тщательно перемешивают. Реактив готовят
ежедневно. Неиспользованный остаток реактива сбрасывают.
Коммерческие
тесты представляют собой
импрегнированные реагентом полоски или диски фильтровальной бумаги.
Контроль
качества проводят в день постановки
теста с культурами P. aeruginosa АТСС 27853 (положительный контроль) и E. coli АТСС 25922 (отрицательный контроль).
Ход
исследования.
Прямой способ
на чашках: Наносят 1 каплю реагента
непосредственно на изучаемую колонию и наблюдают появление темно-фиолетового
окрашивания.
Непрямой
способ на фильтровальной бумаге.
Þ
Помещают полоску
(диск) фильтровальной бумаги в пустую чашку Петри и капают 1-2 капли реактива,
либо используют готовые полоски, импрегнированные реагентом, и смачивают их
деионизированной водой.
Þ
Стерильным
аппликатором или посевной петлей берут исследуемую колонию и размазывают ее по
полоске или диску.
Þ
При положительной
реакции через 10-30 сек. Появляется окрашивание интенсивно синего или
фиолетового цвета. При отрицательной реакции цвет не изменяется. При
неопределенном результате, когда окрашивание появляется позже 30 сек.,
исследование необходимо повторить со свежей культурой (18-24-часовой). Как
правило, грам (-) бактерии с замедленной
оксидазной реакцией не принадлежат к семейству Enterobacteriaceae, так как они не продуцируют фермент цитохромоксидазу.
Ограничения
и предосторожности.
1)
Нельзя использовать для посева культуры петли или
проволоку из нержавеющей стали или нихрома, так как может наблюдаться ложно положительная реакция за счет
образования продуктов окисления при обжиге петли в пламени для стерилизации.
2)
Изучение
бактерий, выросших на агаре МакКонки, Левина или других дифференциальных
средах, не подходит для этого теста, так как индикаторы с этих сред могут дать
ложно отрицательную реакцию.
3)
Ложно
отрицательная реакция может наблюдаться в смешанных культурах, относящихся к
родам Pseudomonas и Neisseria,
так как те виды Pseudomonas,
которые вырабатывают оксидазу, также продуцируют некую ингибирующую субстанцию,
влияющую на выработку оксидазы Neisseria spp.
4)
Импрегнированную
реагентом бумажную полоску после смачивания используют только 1 раз.
5)
Результаты
следует учитывать не более 30 сек.
6)
Во избежание
ошибок при выборе схемы идентификации оксидазный тест следует применять для
всех грам (-) бактерий.