2.3.Ферментация
углеводов (“пестрый ряд”). 
2.7.Тест с трибутирином (для
идентификации M.catarrhalis).
2.8.Тесты
декарбоксилирования и гидролиза аминокислот. 
2.10.Сероводородный
тест (H2S-тест).
2.14.Тест с
метиловым красным. 
2.17.Окислительно-ферментативный
(ОФ) тест.
2.15.  
Тест Фогес-Проскауэра.
Принцип. Этот тест основан на выявлении ацетоина
(ацетил-метилкарбинол) – промежуточного продукта в превращении пировиноградной
кислоты (образующейся при расщеплении глюкозы) по бутиленгликолевому пути. В
присутствии кислорода и КОН ацетоин окисляется в диацетил, образующий
соединение красного цвета. Чувствительность теста возрастает с добавлением α-нафтола
перед добавлением КОН.
Среды и
реагенты. Обычно используют
коммерческие среды или приготовленные самостоятельно.
1.     В качестве основы используют среду Кларка. 
2.     Приготовление реагента А: 
α-нафтол                                                          
этиловый спирт (абсолютный)                     100 мл 
Þ         
Растворяют
α-нафтол в небольшом объеме спирта, переносят в мерный флакон и добавляют
спирт до объема 100 мл (раствор должен быть почти бесцветным). 
Þ         
Раствор сохраняет
стабильность 1 год, хранят в темной посуде при 2-8ºC.
3.     Приготовление реагента Б: 
KOH                                                                 
дистиллированная вода                                 100 мл
Þ         
Взвешивают КОН в
мерной мензурке, добавляют немного воды и переносят мензурку в холодную водяную
баню для предупреждения перегрева. 
Þ         
Доводят объем до
100 мл.
Þ         
Раствор сохраняет
стабильность 1 год, хранят при комнатной температуре в полиэтиленовых или
покрытых парафином стеклянных бутылях. 
Контроль
качества осуществляют с эталонными
культурами K.pneumoniae АТСС 13883 (положительный контроль) и E.coli АТСС
25922 (отрицательный контроль).
Ход
исследования. 
Þ         
Стерильной
петлей, иглой или деревянной палочкой касаются центра отдельной колонии и
производят посев в бульон (5 мл).
Þ         
Посевы инкубируют
при 35ºC не менее 48 часов.
Þ         
Переносят 2,5 мл
бульонной культуры в отдельную пробирку (13х100 мм).
Þ         
Добавляют 0,3 мл
(6 капель) реагента А (α-нафтол).
Þ         
Добавляют 0,1 мл
(2 капли) реагента Б (40% КОН).
Þ         
Осторожно встряхивают
пробирку и оставляют на 10-15 мин, а затем учитывают результат. 
Þ         
При положительной реакции через 15 мин появляется красное (оттенки до розового)
окрашивание; при отрицательной реакции окрашивание
не происходит. 
Альтернативный метод (с ночной инкубацией):
·              
Вносят в 0,5 мл
бульона петлю бактериальной культуры. 
·              
Инкубируют при
35ºC 18-24 ч. 
·              
Добавляют реагент
A (6 капель) и реагент Б (2 капли). 
·              
Встряхивают
пробирки, оставляют на 10-15 мин. и учитывают результат. 
Быстрый метод: 
Вносят в 0,2 мл
бульона петлю бактериальной культуры. 
Инкубируют при
35ºC 4 ч.
Добавляют реагент A и Б (2-3 капли каждого), хорошо встряхивая пробирки
после каждого реагента
Оставляют на 10-15
мин. и учитывают результат. 
Ограничения
и предосторожности. 
При длительной инкубации (более 3
дней) некоторые Фогес-Проскауэр(+) бактерии создают в бульоне кислую среду, что
ведет к слабой положительной или ложно отрицательной реакции. 
Большинство членов семейства  Enterobacteriaceae дают противоположные результаты в тестах с метиленовым
красным и Фогес-Проскауэра. Но в отдельных случаях (H.alvei, P.mirabilis)
могут быть обе положительные реакции (часто замедленные). 
Реагенты следует добавлять в
установленной последовательности, нарушение очередности может вызвать ложно
отрицательную реакцию. 
Избыток КОН может имитировать слабо
положительную реакцию за счет взаимодействия только с α-нафтолом и
появления окрашивания медного оттенка. 
Нельзя учитывать результат позднее
1 часа после добавления реагентов, так как может наблюдаться ложно
положительная реакция за счет появления окрашивания медного цвета.