2.3.Ферментация
углеводов (“пестрый ряд”).
2.7.Тест с трибутирином (для
идентификации M.catarrhalis).
2.8.Тесты
декарбоксилирования и гидролиза аминокислот.
2.10.Сероводородный
тест (H2S-тест).
2.14.Тест с
метиловым красным.
2.17.Окислительно-ферментативный
(ОФ) тест.
2.15.
Тест Фогес-Проскауэра.
Принцип. Этот тест основан на выявлении ацетоина
(ацетил-метилкарбинол) – промежуточного продукта в превращении пировиноградной
кислоты (образующейся при расщеплении глюкозы) по бутиленгликолевому пути. В
присутствии кислорода и КОН ацетоин окисляется в диацетил, образующий
соединение красного цвета. Чувствительность теста возрастает с добавлением α-нафтола
перед добавлением КОН.
Среды и
реагенты. Обычно используют
коммерческие среды или приготовленные самостоятельно.
1. В качестве основы используют среду Кларка.
2. Приготовление реагента А:
α-нафтол
этиловый спирт (абсолютный) 100 мл
Þ
Растворяют
α-нафтол в небольшом объеме спирта, переносят в мерный флакон и добавляют
спирт до объема 100 мл (раствор должен быть почти бесцветным).
Þ
Раствор сохраняет
стабильность 1 год, хранят в темной посуде при 2-8ºC.
3. Приготовление реагента Б:
KOH
дистиллированная вода 100 мл
Þ
Взвешивают КОН в
мерной мензурке, добавляют немного воды и переносят мензурку в холодную водяную
баню для предупреждения перегрева.
Þ
Доводят объем до
100 мл.
Þ
Раствор сохраняет
стабильность 1 год, хранят при комнатной температуре в полиэтиленовых или
покрытых парафином стеклянных бутылях.
Контроль
качества осуществляют с эталонными
культурами K.pneumoniae АТСС 13883 (положительный контроль) и E.coli АТСС
25922 (отрицательный контроль).
Ход
исследования.
Þ
Стерильной
петлей, иглой или деревянной палочкой касаются центра отдельной колонии и
производят посев в бульон (5 мл).
Þ
Посевы инкубируют
при 35ºC не менее 48 часов.
Þ
Переносят 2,5 мл
бульонной культуры в отдельную пробирку (13х100 мм).
Þ
Добавляют 0,3 мл
(6 капель) реагента А (α-нафтол).
Þ
Добавляют 0,1 мл
(2 капли) реагента Б (40% КОН).
Þ
Осторожно встряхивают
пробирку и оставляют на 10-15 мин, а затем учитывают результат.
Þ
При положительной реакции через 15 мин появляется красное (оттенки до розового)
окрашивание; при отрицательной реакции окрашивание
не происходит.
Альтернативный метод (с ночной инкубацией):
·
Вносят в 0,5 мл
бульона петлю бактериальной культуры.
·
Инкубируют при
35ºC 18-24 ч.
·
Добавляют реагент
A (6 капель) и реагент Б (2 капли).
·
Встряхивают
пробирки, оставляют на 10-15 мин. и учитывают результат.
Быстрый метод:
Вносят в 0,2 мл
бульона петлю бактериальной культуры.
Инкубируют при
35ºC 4 ч.
Добавляют реагент A и Б (2-3 капли каждого), хорошо встряхивая пробирки
после каждого реагента
Оставляют на 10-15
мин. и учитывают результат.
Ограничения
и предосторожности.
При длительной инкубации (более 3
дней) некоторые Фогес-Проскауэр(+) бактерии создают в бульоне кислую среду, что
ведет к слабой положительной или ложно отрицательной реакции.
Большинство членов семейства Enterobacteriaceae дают противоположные результаты в тестах с метиленовым
красным и Фогес-Проскауэра. Но в отдельных случаях (H.alvei, P.mirabilis)
могут быть обе положительные реакции (часто замедленные).
Реагенты следует добавлять в
установленной последовательности, нарушение очередности может вызвать ложно
отрицательную реакцию.
Избыток КОН может имитировать слабо
положительную реакцию за счет взаимодействия только с α-нафтолом и
появления окрашивания медного оттенка.
Нельзя учитывать результат позднее
1 часа после добавления реагентов, так как может наблюдаться ложно
положительная реакция за счет появления окрашивания медного цвета.